Lonza Nucleofector 384孔高通量細胞核轉染系統(tǒng)
——基因治療研究、藥物靶點高效篩選
北京澤平代理的德國進口Lonza Nucleofector 384孔高通量細胞核轉染系統(tǒng)(384-well Nucleofector System,原HT Nucleofector System,簡稱384孔核轉儀),具備Nucleofector技術快速處理、高轉染效率、高細胞活力的特點,每孔可設置不同的轉染程序,實現1~384樣品同時轉染,滿足CRISPR/Cas9基因編輯篩選、藥物靶點研究等高通量轉染的需求。

2021年是Lonza Nucleofector高效細胞核轉染技術面世20周年,作為非病毒轉染方法,大量成功用于原代細胞、干細胞、神經元、難轉染細胞系中,文獻引用超過10,000篇,多年來幫助推動基因治療研究、細胞治療研究、免疫治療研究的發(fā)展。
Lonza 384孔核轉儀,作為獨立的轉染平臺,由一個轉染384孔板的工作模塊、一個提供高壓脈沖的電源模塊、一個用于設置轉染參數的PC端操作軟件組成,耗材使用配套384孔電轉板nucleocuvete plate(24×16),每孔為20μL體系,每一個孔可分別設置完全不同的轉染程序,1min內完成全部384個不同樣本的快速轉染,同時具備高轉染效率、高通量、高重復性的特點,廣泛應用于陣列cDNA、RNAi、CRISPR文庫篩選中,成為藥物靶點、疾病機理研究的高效研發(fā)工具。


Lonza 384孔核轉儀優(yōu)勢
1、高效轉染——采用Lonza專利Nucleofector細胞核轉染技術,通過針對每種細胞特殊優(yōu)化的電轉染程序,大幅提升轉染效率,通過細胞特異性轉染液、無鋁離子毒害的新型聚合物電極,構建溫和轉染環(huán)境,提升轉染效率的同時,提高轉染后細胞活力,維持細胞功能完整。
2、高通量,快速處理——每1個孔均可設置特定轉染程序,可同時運行384個不同程序,實現真正的高通量轉染。1min內可完成1個384孔板的滿板轉染,可旋轉操作盤能夠處理2個384孔板,實現快速、規(guī);幚怼

3、低成本——每孔轉染細胞數量2E4~1E6個,可用較低的細胞和耗材成本進行高通量的實驗優(yōu)化。
4、線性放大規(guī)模——使用384孔核轉儀摸索的優(yōu)化轉染條件,可直接用于Lonza其他大體積核轉儀模塊中,線性放大實驗成果。
5、自動化處理——384孔電轉板符合SBS標準,可無縫對接自動化液體處理系統(tǒng),提高實驗整體效率,減少人為誤差。

引用文獻
1. Gordon, D., Hiatt, J., Bouhaddou, M. et al. Comparative host-coronavirus protein interaction networks reveal pan-viral disease mechanisms. Science, 370, 6521 (2020). https://www.science.org/doi/10.1126/science.abe9403#F5
2. Mac Kain, A., Maarifi, G., Aicher, S. et al. 2021. Identification of DAXX As A Restriction Factor Of SARS-CoV-2 Through A CRISPR/Cas9 Screen. https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2021.05.06.442916v1.full
3. Obara, E.A.A., Aguilar-Morante, D., Rasmussen, R.D. et al. SPT6-driven error-free DNA repair safeguards genomic stability of glioblastoma cancer stem-like cells. Nat Commun 11, 4709 (2020). https://doi.org/10.1038/s41467-020-18549-8
4. Monkley, S., Overed-Sayer, C., Parfrey, H. et al. Sensitization of the UPR by loss of PPP1R15A promotes fibrosis and senescence in IPF. Sci Rep 11, 21584 (2021). https://doi.org/10.1038/s41598-021-00769-7
5. Tong, Y., J?rgensen, T.S., Whitford, C.M. et al. A versatile genetic engineering toolkit for E. coli based on CRISPR-prime editing. Nat Commun 12, 5206 (2021). https://doi.org/10.1038/s41467-021-25541-3
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